“1971 年，Judah Folkman 教授提出 “腫瘤生長(zhǎng)和轉(zhuǎn)移依賴(lài)于血管新生” 理論，認(rèn)為新血管的形成對(duì)于腫瘤生長(zhǎng)和轉(zhuǎn)移至關(guān)重要?！?/p>
腫瘤細(xì)胞需要新生血管來(lái)提供營(yíng)養(yǎng)和氧氣，以維持其持續(xù)生長(zhǎng)和擴(kuò)散。研究腫瘤細(xì)胞的血管生成能力和血管侵襲能力對(duì)于了解腫瘤生物學(xué)機(jī)制，以及發(fā)展抗腫瘤治療策略具有重要意義。成血管實(shí)驗(yàn)可以模擬腫瘤微環(huán)境，評(píng)估腫瘤細(xì)胞及其周?chē)?xì)胞對(duì)血管生成的影響。
成血管實(shí)驗(yàn)怎樣設(shè)計(jì)？
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一文走進(jìn)熱門(mén)實(shí)驗(yàn)技術(shù)，為發(fā)表高分文獻(xiàn)提供新思路，“膠”你做實(shí)驗(yàn)！
TIPS：
l 在成血管前需要饑餓培養(yǎng)細(xì)胞，以增加細(xì)胞對(duì)生長(zhǎng)因子和刺激因子的敏感性，促進(jìn)血管生成。常用于成血管研究的細(xì)胞類(lèi)型有 HUVEC、HMVEC、HMEC-1 等
l 在成血管實(shí)驗(yàn)中通常有對(duì)照組與添加促進(jìn)或抑制血管生成的藥物進(jìn)行對(duì)比，以研究該藥物對(duì)腫瘤細(xì)胞成血管的影響。
l 一般成血管實(shí)驗(yàn)使用的基質(zhì)膠濃度建議至少 10mg/mL，更高濃度的基質(zhì)膠效果會(huì)縮短血管開(kāi)始形成的時(shí)間，并且血管形成時(shí)間更長(zhǎng)，易于確定觀察時(shí)間窗口。
前排插播
前排插播
NEST 的 GelNestTM基質(zhì)膠取自小鼠腫瘤組織，可增強(qiáng)細(xì)胞粘附、分化和增殖。它模擬生理環(huán)境，是組織工程和細(xì)胞培養(yǎng)研究的理想選擇，尤其適用于類(lèi)器官和干細(xì)胞培養(yǎng)。它還有助于癌癥研究，如侵襲、血管生成和體內(nèi)腫瘤形成實(shí)驗(yàn)。
成血管專(zhuān)用款基質(zhì)膠濃度在 12-14mg/mL，相比標(biāo)準(zhǔn)款與低因子款更適合用于體外成血管實(shí)驗(yàn)。
材料與方法
材料與方法
Part.01 GelNestTM成血管專(zhuān)用基質(zhì)膠包被
1. 在 96 孔板的底部均勻鋪上 50μL GelNest?基質(zhì)膠原液（推薦 211492，濃度>12mg/mL），添加時(shí)避免氣泡產(chǎn)生。24 孔每孔約加 280μL，其他孔板按培養(yǎng)面積大小增減。（為防止基質(zhì)膠粘附在槍頭內(nèi)壁， 在吸取基質(zhì)膠前可用槍頭吹吸一次 FBS，對(duì)槍頭內(nèi)壁進(jìn)行 FBS 潤(rùn)洗。）
2. 將培養(yǎng)板置于 37℃培養(yǎng)箱 30 至 60 分鐘。若有液體剩余，可用移液槍輕輕吸出。
3. 包被好的培養(yǎng)板請(qǐng)盡快使用。
Part.02 HUVEC細(xì)胞培養(yǎng)與成血管
1. 將 HUVEC 細(xì)胞培養(yǎng)至 70-80%的匯合度，原代細(xì)胞代數(shù)應(yīng)該在 5 代以?xún)?nèi)。
2. 將完全培養(yǎng)基替換成饑餓細(xì)胞用培養(yǎng)基：含 0.2% FBS（減血清）、2mM L-谷氨酰胺、1mM 丙酮酸鈉、100U/mL 青霉素和 100μg/mL 鏈霉素的 DMEM 培養(yǎng)基，饑餓培養(yǎng) 24 小時(shí)。
3. 胰酶消化 HUVEC 細(xì)胞并進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)。
4. 將 5x104個(gè) HUVEC 細(xì)胞加入含基質(zhì)膠的 96 孔板的單孔中，每孔體積控制在 200μL。將 96 孔板放入培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)。
5. 血管樣網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)預(yù)計(jì)將在 3 至 12 小時(shí)內(nèi)形成。首次實(shí)驗(yàn)請(qǐng)每隔一小時(shí)觀察一次，以防血管結(jié)構(gòu)繼續(xù)分化，錯(cuò)過(guò)觀察窗口。
Part.03 染色與觀察
1. 血管樣網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)可以直接用相差顯微鏡觀察，也可以用以下步驟進(jìn)行熒光染色。
2. 小心去除培養(yǎng)基，避免破壞血管結(jié)構(gòu)。加入200μL HBSS緩沖液潤(rùn)洗兩次，并除去。
3. 加入1/1000濃度的Calcein AM（綠色）培養(yǎng)基進(jìn)行染色。
4. 使用熒光顯微鏡對(duì)細(xì)胞進(jìn)行成像，并記錄分析血管網(wǎng)絡(luò)的形態(tài)和特征。
實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析
實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析
圖 1.HUVEC 細(xì)胞分別在競(jìng)品和本公司（GelNest Matrix）基質(zhì)膠上培養(yǎng) 9 個(gè)小時(shí)后形成血管網(wǎng)絡(luò)的結(jié)果。標(biāo)尺為 300μm。
可觀察到在 GelNestTM 基質(zhì)膠中血管樣網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)形成良好。
常見(jiàn)問(wèn)題與解答
常見(jiàn)問(wèn)題與解答
1. 應(yīng)該采用何種培養(yǎng)基稀釋基質(zhì)膠？
建議使用不加雙抗、不加胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)基稀釋基質(zhì)膠。
2. 如何使鋪膠更均勻？
槍頭要垂直于內(nèi)孔的正上方，防止有基質(zhì)膠流經(jīng)孔壁殘留。
若是孔的底部沒(méi)有鋪滿(mǎn)基質(zhì)膠，可以晃動(dòng)一下96孔板，使底部鋪膠均勻。
若還是沒(méi)有均勻鋪滿(mǎn)底部，可用槍頭稍微攪動(dòng)一下。
3. HUVEC必須用專(zhuān)用培養(yǎng)基嗎？能不能用普通培養(yǎng)基？
(1) 若使用普通培養(yǎng)基需要添加生長(zhǎng)因子，常見(jiàn)的有ECGF/ECGF，ECGF。
(2) 普通培養(yǎng)基+生長(zhǎng)因子的方式價(jià)格較貴，建議使用專(zhuān)用ECM內(nèi)皮專(zhuān)用培養(yǎng)基。
4. HUVEC細(xì)胞系換液第二天為何出現(xiàn)空泡化？如何解決空泡化問(wèn)題？
可能原因：
(1) 培養(yǎng)液的pH值與細(xì)胞正常所需pH值差別太大，細(xì)胞代謝異常導(dǎo)致空泡化；
(2) 在細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程中由于血清濃度不夠、藥物作用、外界刺激等情況，導(dǎo)致細(xì)胞代謝出現(xiàn)問(wèn)題，內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激導(dǎo)致出現(xiàn)細(xì)胞空泡化的情況。
解決方法：
(1)測(cè)定完全培養(yǎng)基的pH，看其酸堿性是否適宜。多數(shù)細(xì)胞適宜的pH范圍為7.2-7.4。
(2)若培養(yǎng)基或血清是已開(kāi)封且存放了很久，建議使用新鮮的完全培養(yǎng)基給細(xì)胞換液；若都是新開(kāi)封的，建議使用新批次的基礎(chǔ)培養(yǎng)基或血清來(lái)配制培養(yǎng)液，給細(xì)胞換液并進(jìn)行觀察。
5. HUVEC培養(yǎng)過(guò)程中出現(xiàn)聚團(tuán)如何處理？
聚團(tuán)可能是因?yàn)榕囵B(yǎng)板親水性差或者血清中的促貼壁因子不足。
解決方法：
(1) 培養(yǎng)瓶使用前一天使用明膠包被。
包被方法：以T25瓶為例，取用5mL明膠放入T25瓶中，37℃放置30分鐘以上，將多余的明膠吸出。
(2) 提高培養(yǎng)液中基質(zhì)膠濃度。
(3) 使用ECM內(nèi)皮專(zhuān)用培養(yǎng)基進(jìn)行配置。
6. 如何判斷加入的基質(zhì)膠體積是否合適？
在孔板下方放置一張格子紙(如圖)，垂直透過(guò)每個(gè)孔觀察：
(1) 如果觀察到的格子比實(shí)際尺寸小，基質(zhì)膠加入的體積過(guò)少；
(2) 如果觀察到的格子比實(shí)際尺寸大，基質(zhì)膠加入的體積過(guò)多；
(3) 如果觀察到的格子與實(shí)際尺寸一致，基質(zhì)膠加入的體積適合。
7. 如何解決成管實(shí)驗(yàn)中細(xì)胞不能形成連續(xù)的網(wǎng)格的問(wèn)題？
建議使用3-5代狀態(tài)較好且融合度70%-80%的HUVEC細(xì)胞進(jìn)行成管試驗(yàn)，此時(shí)的細(xì)胞成管能力較強(qiáng)。
在顯微鏡下邊觀察邊使用胰酶消化細(xì)胞，當(dāng)細(xì)胞變圓時(shí)及時(shí)終止消化過(guò)程。消化過(guò)度會(huì)影響成管效果。
盡可能保證細(xì)胞數(shù)量約為3萬(wàn)個(gè)/孔，細(xì)胞數(shù)量過(guò)少會(huì)使細(xì)胞無(wú)法形成連續(xù)的網(wǎng)絡(luò)。
選擇低生長(zhǎng)因子基質(zhì)膠進(jìn)行成管實(shí)驗(yàn)時(shí)，可考慮在培養(yǎng)基中添加生長(zhǎng)因子，刺激細(xì)胞形成網(wǎng)絡(luò)狀。
8. 細(xì)胞鋪板數(shù)量如何確定？
由于計(jì)數(shù)方式的差異可能導(dǎo)致細(xì)胞數(shù)量的差異，可進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn)測(cè)試合適的細(xì)胞數(shù)鋪板，適宜的細(xì)胞數(shù)量如下圖：
9. 成管實(shí)驗(yàn)需要幾個(gè)小時(shí)？小管形成后為何會(huì)塌縮？
成管時(shí)間與細(xì)胞狀態(tài)密切相關(guān)。細(xì)胞狀態(tài)好時(shí)，2-3小時(shí)開(kāi)始成管，細(xì)胞狀態(tài)較差時(shí)，可能18-24h成管。建議第一次實(shí)驗(yàn)時(shí)，每隔一個(gè)小時(shí)觀察一次。
成管時(shí)間取決于培養(yǎng)基中血管生成因子的濃度。腫瘤條件培養(yǎng)基中血管生成因子較豐富，容易成管，而基礎(chǔ)培養(yǎng)基所需要的成管時(shí)間較久。
如果使用原代內(nèi)皮細(xì)胞而非永生化細(xì)胞，開(kāi)始成管的時(shí)間會(huì)延遲數(shù)個(gè)小時(shí)。
小管形成后有塌縮可能是培養(yǎng)時(shí)間過(guò)久，內(nèi)皮細(xì)胞發(fā)生凋亡。
10. 血管形成實(shí)驗(yàn)中使用的凝膠是否需要含酚紅？
對(duì)于使用相差顯微鏡，酚紅不會(huì)干擾圖片，并且由于其顏色，處理更容易。
然而，當(dāng)使用熒光顯微鏡時(shí)，酚紅可能會(huì)干擾探頭的波長(zhǎng)。在這種情況下，最好使用無(wú)酚紅凝膠。
